描述
JC-1 线粒体膜电位荧光探针
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Rhodamine 123罗丹明123;JC-1;JC-10;CCCP;CAS:62669-70-9
产品信息
产品名称 | 产品编号 | CAS NO. | 规格 | 价格(元) |
JC-1 (5 mg/ml in DMSO) 线粒体膜电位荧光探针 | MX3202-200UL | 3520-43-2 | 200μl (1mg) | 600 |
产品描述
JC-1是一种广泛用于检测线粒体膜电△Ψm位的理想荧光探针。JC-1染料以电势依赖性的方式积聚在线粒体内,可以用来检测细胞、组织或纯化的线粒体膜电位。正常线粒体内,JC-1聚集在线粒体基质中形成聚合物,聚合物发出强烈的红色荧光(Ex=585 nm, Em=590 nm);不健康的线粒体由于膜电位的下降或丧失,JC-1只能以单体的形式存在于胞浆中,产生绿色荧光(Ex=514 nm, Em=529 nm)。
JC-1不仅可用于定性检测,因颜色的变化可以非常直接的反映出线粒体膜电位的变化。也可以用于定量检测,因线粒体的去极化程度可以通过红/绿荧光强度的比例来衡量。观察时,只需使用常规的观察红色荧光和绿色荧光的设置即可。
本品为溶于DMSO的JC-1储存液,浓度5 mg/ml,CAS NO.3520-43-2 ,只需用合适的缓冲液稀释到工作浓度即可使用。JC-1用于检测细胞的线粒体膜电位时常用的浓度范围为1~20 µg/ml,对于很多细胞适宜采用的工作浓度为10 µg/ml。
产品特性
1)化学名:5,5‘,6,6’-Tetrachloro-1,1‘,3,3’-tetraethylbenzimidazolylcarbocyanine iodide
2)CAS NO:3520-43-2
3)分子式:C25H27Cl4IN4
4)分子量:652.23 g/mol
5) 纯度:>95%(HPLC)
6) Ex/Em:单体形式(monomer form):Ex=514 nm, Em=529 nm;
聚合物形式(J-aggregate form):Ex=585 nm, Em=590 nm;
保存与运输方法
保存:-20℃干燥避光保存。第一次使用,建议将储存液分装成单次用量,避免反复冻融,约一年有效。
运输:冰袋运输。
注意事项
1)JC-1是光敏感性的,所有染色步骤的操作过程中避免强光接触。
2)JC-1染色完成后,立即进行后续的结果分析非常必要;
3)为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
使用方法
1. 染色工作液制备
将冻存的储存液置于室温充分融化,之后用缓冲液或者预热的培养基直接稀释储存液(5 mg/ml)到需要的工作浓度,边震荡边稀释,充分混匀。为了去除任何不溶颗粒,建议13,000 x g离心JC-1工作液1 min,小心吸取上清转移到新的管子内。整个过程要避光操作。【注意】:因JC-1不溶于水,很可能在稀释到工作液的过程中形成聚集颗粒,建议细胞染色前用离心或者过滤的方法去除这些颗粒后再使用。
2. JC-1染色步骤(流式细胞仪)
1)于6-,12或24-孔板上进行细胞铺板,调整密度为5×105cells/ml。37℃,5% CO2培养箱培养过夜。选择合适的化合物根据特定的步骤进行凋亡诱导。【注意】:进行凋亡诱导时的细胞密度建议不超过1×106cells/ml,也可根据自己的细胞类型培养至合适的密度。
2)取0.5 ml细胞悬液至无菌的离心管内;
3)室温条件400 x g离心5 min;吸掉上清。
4)用0.5 ml JC-1工作液重悬细胞,于37℃,5% CO2培养箱孵育15-30 min;【注意】:一般情况,15 min足以进行充分的染色。
5)室温条件400 x g离心5 min;吸掉上清;
6)用2 ml细胞培养液或者缓冲液重悬细胞,之后室温条件400 x g离心5 min;吸掉上清;
7)重复步骤6);
8)用0.5 ml新鲜培养液或者缓冲液重悬细胞,即可进行后续的流式分析。【注意】:请马上进行流式定量分析,此细节很重要。
数据分析:含有红色JC-1聚集物的健康细胞线粒体用FL2通道检测;含有绿色JC-1单体的凋亡或不健康细胞用FL1(FITC)通道检测。
3. JC-1染色步骤(荧光显微镜)
A. 悬浮细胞
1)-6)同上JC-1染色步骤(流式细胞仪);
7)用0.3 ml缓冲液重悬细胞,即可进行荧光显微镜检测。【注意】:请马上进行荧光显微分析,此细节重要。
数据分析:使用可同时检测FITC/TRITC或者FITC/Texas RedTM的双带带通滤波器进行检测。健康细胞因JC-1聚集后线粒体呈红色,最大发射波长为590 nm。而凋亡/坏死细胞内的JC-1以单体形式存在,线粒体呈绿色,最大发射波长为530 nm。
B. 贴壁细胞
1)培养皿内用盖玻片进行细胞爬片或者细胞培养在腔室玻片(chamber slide)上。选择合适的化合物根据特定的步骤进行凋亡诱导。
2)染色前开始配制JC-1工作液,配制步骤见上。
3)吸掉细胞培养液,然后加入足够覆盖所有细胞的JC-1工作液。于37℃,5% CO2培养箱孵育15-30 min;【注意】:一般情况,15 min足以进行充分的染色。
4)吸掉培养液,然后用合适的缓冲液清洗细胞2次。
5)加入2ml细胞培养液(培养液可含血清和酚红)或者PBS缓冲液,于荧光显微镜或者共聚焦显微镜下观察。数据分析同A.悬浮细胞。
4. JC-1染色步骤(荧光酶标仪)
1)-7)同上JC-1染色步骤(流式细胞仪);
8)用0.3 ml缓冲液重悬细胞;然后按照每孔0.1 ml的量将染色好的细胞转移到黑色的96孔板内,即可进行荧光酶标板分析。【注意】:请马上进行荧光显微分析,此细节重要。
数据分析:健康细胞,JC-1单体聚集形成聚合物,线粒体呈现强烈的红色荧光(激发波长550 nm,发射波长600 nm)。而凋亡或坏死细胞内JC-1以单体形式存在,线粒体呈强烈的绿色荧光(激发波长485 nm,发射波长535nm)。之后计算红色荧光信号与绿色荧光信号的比值,用来判断细胞健康程度。
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— — Written/Edited by V. Shallan【版权归集奇生物/MKBio懋康所有】